Hypertrophie gamétocytaire virale de l'huître
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Catégorie
Catégorie 2 (au Canada et d'intérêt régional)
Noms courants et généralement admis de l'organisme ou de l'agent pathogène
Hypertrophie virale des gamitocytes, « VGH », « Ovacystis ».
Nom scientifique ou classification taxonomique
La pathologie a été associée à un virus de type papillomavirus (ou virus de type papovavirus ou virus du polyome), et présente des caractéristiques morphologiques semblables aux virus de la famille Papillomaviridae et Polyomarviridae Renault (2016) a indiqué que le terme virus de type papillomavirus doit être utilisé car leurs affiliations exactes n'ont pas encore été trouvées.
Répartition géographique
L'hypertrophie gamétocytaire virale a été rapportée chez les Crassostrea virginica du Canada atlantique, de l'est des États-Unis, de la côte de la Floride dans la partie nord-est du golfe du Mexique et les lagunes côtières du sud du golfe du Mexique, au Mexique (Farley, 1978, 1985; Meyers, 1981; McGladdery, 1990, 1999, 2011; McGladdery et al. 1993; Winstead, 1998, 2004; Winstead et Courtney, 2003; Aguirre-Macedo et al. 2007). Des lésions similaires ont été observées chez d'autres espèces d'huîtres provenant de la France (Garcia et al. 2006), Allemagne (Watermann et al. 2008), Irlande (Cheslett et al. 2009), côte ouest des États-Unis (Meyers et al. 2009), de la Corée (Choi et al. 2004) et du Japon (Farley 1985, Arzul et al. 2017). Les particules virales décrites par Cheslett et al. (2009) pour Crassostrea gigas en Irlande semblent être semblables à celles décrites pour C. virginica des États-Unis et du Canada et à celles décrites pour C. gigas de la Corée et de la France (Renault, 2016).
Espèces hôtes
Crassostrea virginica, et signalements non confirmés chez des Crassostrea gigas, Saccostrea (=Crassostrea) commercialis, Crassostrea rhizophorae et Ostrea conchaphila (=Ostrea lurida) (Farley 1985). On a signalé l'infection d'autres bivalves, notamment Pinctada maxima et Mya arenaria, par des virus de type papova.
Impact sur les hôtes
Entraîne une hypertrophie massive des gamètes et de l'épithélium gamétogénique grâce à une réplication du noyau des cellules hôtes. En cas d'infiltration de légère à modérée d'hémocytes dans des zones localisées proches des gamètes infectés, la réaction de l'hôte à l'infection est négligeable. d'habitude, le niveau d'infection est faible (habituellement moins de 5 cellules infectées par coupe tissulaire de 6 µm), mais on observe sporadiquement une prévalence de l'infection pouvant aller jusqu'à 80 % (McGladdery 1999, 2011). Au Canada atlantique, on observe également cette infection chez des huîtres immatures dont les cellules germinales sont infectées (McGladdery et al. 1993). Malgré l'hypertrophie massive et le déplacement des tissus autour des cellules infectées, on n'a pas observé d'effet nocif sur la santé ou la fécondité des huîtres ni d'indice de mortalité connexe (McGladdery 1999). Des études expérimentales sont nécessaires pour déterminer si le virus peut nuire à la productivité du stock de géniteurs de l'écloserie (McGladdery et al. 1993) Arzul et al. (2017) ont suggéré que la réaction de défense négligeable de l'hôte peut indiquer que les particules virales ont un faible impact sur les huîtres.
Techniques de diagnostic
Histologie
Examiner des coupes transversales de la gonade et observer les ovules hypertrophiés anormalement gonflés (jusqu'à 500 µm de diamètre), le sperme et les cellules germinales basophiles (coloration à l'hématoxyline et à l'éosine) ou positifs à la coloration Feulgen (Choi et al. 2004, Meyers et al. 2009, McGladdery 2011). Les ovules hypertrophiés avaient un niveau réduit de cytoplasme et des inclusions nucléaires granulaires qui ont réagi positivement à la coloration Feulgen, indiquant ainsi la présence d'ADN (Farley 1985).
Microscopie électronique
Présence de particules virales icosahédriques sans enveloppe de 38 à 55 nm de diamètre dans le noyau des cellules gonadiques hypertrophiées (Farley 1985, Choi et al. 2004, Meyers et al. 2009).
Méthodes de contrôle
On ne connaît aucune méthode de prévention ou de contrôle.
Références
Aguirre-Macedo, M.L., R.A. Simá-Álvarez, M.K. Román-Magaña and J.I. Güemez-Ricalde. 2007. Parasite survey of the Eastern oyster Crassostrea virginica in coastal lagoons of the southern Gulf of Mexico. Journal of Aquatic Animal Health 19: 270–279.
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Cheslett, D., F. Mc Kiernan, C. Hickey and E. Collins. 2009. Viral gametocytic hypertrophy of the Pacific oyster Crassostrea gigas in Ireland. Diseases of Aquatic Organisms 83: 181-185.
Choi, D.L., N.-S. Lee, H.J. Choi, M.-A. Park, S.E. McGladdery et M.S. Park. 2004. Viral gametocytic hypertrophy caused by a papova-like virus infection in the Pacific oyster Crassostrea gigas in Korea. Diseases of Aquatic Organisms 59: 205-209.
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Winstead, J.T., A.K. Volety et S.G. Tolley. 2004. Parasitic and symbiotic fauna in oysters (Crassostrea virginica) collected from the Caloosahatchee River and estuary in Florida. Journal of Shellfish Research 23: 831-840.
Citation
Bower, S.M. (2022): Synopsis of Infectious Diseases and Parasites of Commercially Exploited Shellfish: Viral Gametocytic Hypertrophy of Oysters.
Date de la dernière révision : Décembre 2022
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