Nécrose baculovirale de la glande intestinale (BMN) des crevettes penaeides
Sur cette page
Catégorie
Catégorie 3 (pas d'hôte au Canada)
Noms courants et généralement admis de l'organisme ou de l'agent pathogène
Nécrose baculovirale de la glande intestinale (hépatopancréas), maladie trouble de la glande de l'intestin moyen, maladie hépatique de la turbidité blanche, maladie de la turbidité blanche.
Nom scientifique ou affiliation taxonomique
PjNOB I, un baculovirus non occlus infectant l'intestin, où Pj = P. japonicus, la première espèce chez laquelle l'agent a été observé; NOB = baculovirus non occlus; I = premier type rapporté de ce genre de virus. L'ancienne classification du baculovirus non occlus de type C a été abandonnée.
Répartition géographique
- Sud du Japon et de la Corée
- Asie de l'Est et du Sud-Est et Australie
Espèces hôtes
- Penaeus japonicuset, expérimentalement, chez Penaeus monodon, Penaeus chinensis, Penaeus semisulcatus.
- Penaeus monodon et Penaeus plebejus.
Impact sur les hôtes
Infecte généralement les larves et les postlarves à un stade précoce, lesquelles peuvent subir des mortalités élevées. La turbidité blanche apparente de l'hépatopancréas est due à la nécrose de l'épithélium du tubule de l'hépatopancréas et peut-être de l'épithélium de la muqueuse. Les larves flottent de manière inactive, mais ont tendance à résister à la maladie à des stades plus avancés (postlarves tardives). La source de l'infection est documentée comme provenant des femelles reproductrices capturées à l'état sauvage.
Techniques de diagnostic
Observations générales
Apparition soudaine de turbidité blanche au niveau de la glande de l'intestin moyen (hépatopancréas) chez les larves et les postlarves, associée à un taux élevé de mortalité. Les larves flottent de manière inactive à la surface et présentent une ligne blanche au niveau de l'intestin moyen à travers l'abdomen.
Frottis
Hépatopancréas de postlarve sans corps d'occlusion polyédrique ou sphérique, mais avec des noyaux hypertrophiés dans les cellules épithéliales de l'intestin moyen examiné sous un éclairage en champ noir équipé d'un condenseur de type humide. Les noyaux infectés apparaissent blancs sur le fond sombre, en raison des rayons réfléchissants et diffractés produits par de nombreuses particules de virus dans le noyau. La coloration de Feulgen permet de mieux différencier les noyaux normaux (environ 10 µm de diamètre) et les noyaux infectés hypertrophiés (environ 20 à 30 µm de diamètre). En règle générale, des bactéries Gram négatives abondantes proviennent d'une infection secondaire.
Histologie
Les cellules épithéliales du tubule de l'hépatopancréas ayant subi une nécrose ont des noyaux hypertrophiés plus marqués, caractérisés par une chromatine marginée, une chromatine nucléaire moindre, une dissociation nucléolaire et l'absence de corps d'occlusion caractéristiques des infections par baculovirus occlus (de type SNPV ou de type A).
Essai immunologique
Une procédure de diagnostic direct d'anticorps fluorescents utilisant des anticorps polyclonaux marqués a été élaborée (Sano et al. 1984). Toutefois, les anticorps contre la nécrose baculovirale de la glande intestinale ne sont pas encore commercialisés.
Bioessai
Des cas de nécrose baculovirale de la glande intestinale provenant de porteurs asymptomatiques ont été détectés avec un frottis chez des larves mysis ou des postlarves précoces de 2 à 4 jours après l'inoculation.
Sondes à ADN
Des fragments d'ADN génomique de baculovirus non occlus provenant de Penaeus japonicusont été clonés de manière partielle et utilisés avec succès comme sonde pour l'analyse par transfert de Southern (Arimoto et al. 1995).
Méthodes de contrôle
Aucun traitement connu. Détruire les stocks infectés et désinfecter l'équipement et les bassins. Éviter d'utiliser des reproducteurs infectés par le baculovirus. Laver les œufs fertilisés dans de l'eau de mer propre peut avoir un effet prophylactique.
Références
Arimoto, M., T. Yamazaki, Y. Mizuta et I. Furusawa. 1995. Characterization and partial cloning of the genomic DNA of a baculovirus from Penaeus japonicus (PjNOB = BMNV). Aquaculture 132: 213-220.
Brock, J.A. et D.V. Lightner. 1990. Diseases of Crustacea. Diseases caused by microorganisms. In: O. Kinne (ed.). Diseases of Marine Animals. Volume III: Introduction, Cephalopoda, Annelida, Crustacea, Chaetognatha, Echinodermata, Urochordata. Biologische Anstalt Helgoland, Hamburg, p. 258-260.
Lightner, D.V. 1988. Baculoviral Midgut Gland Necrosis (BMN) Disease of Penaeus japonicus. In: C.J. Sindermann and D.V. Lightner (eds.). Disease Diagnosis and Control in North American Aquaculture. Developments in Aquaculture and Fisheries Science 17. Elsevier, Amsterdam, p. 26-29.
Lightner, D.V. (ed.). 1996. A Handbook of Shrimp Pathology and Diagnostic Procedures for Disease of Cultured Penaeid Shrimp. World Aquaculture Society, Baton Rouge.
Lightner, D.V., T.A. Bell, R.M. Redman, L.L. Mohney, J.M. Natividad, A. Rukyani et A. Poernomo. 1992. A review of some major diseases of economic significance in penaeid prawns/shrimp of the Americas and Indopacific. In: M. Shariff, R.P. Subasinghe and J.R. Arthur (eds.). Diseases in Asian Aquaculture. I. Fish Health Section, Asian Fisheries Society. Manila, Philippines, p. 57-80.
Momoyama, K. 1992. Viral diseases of cultured penaeid shrimp in Japan. In: W. Fulks and K.L. Main (eds.). Diseases of Cultured Penaeid Shrimp in Asia and the United States. The Oceanic Institute, Honolulu, p. 185-192.
Natividad, J.M. et D.V. Lightner. 1992. Prevalence and geographic distribution of MBV and other diseases in cultured giant tiger prawns (Penaeus monodon) in the Philippines. In: W. Fulks and K.L. Main (eds.). Diseases of Cultured Penaeid Shrimp in Asia and the United States. The Oceanic Institute, Honolulu, p. 139-160.
Park, M.A. 1992. The status of culture and diseases of penaeid shrimp in Korea. In: W. Fulks and K.L. Main (eds.). Diseases of Cultured Penaeid Shrimp in Asia and the United States. The Oceanic Institute, Honolulu, p. 161-167.
Sano, T. et K. Momoyama. 1992. Baculovirus infection of penaeid shrimp in Japan. In: W. Fulks and K.L. Main (eds.). Diseases of Cultured Penaeid Shrimp in Asia and the United States. The Oceanic Institute, Honolulu, p. 169-174.
Sano, T., T. Nishimura, H. Fukuda et T. Hayashida. 1984. Baculo-virus midgut gland necrosis (BMN) of the Kuruma shrimp (Penaeus japonicus) larvae in intensive culture systems. Helgoländer Meeresuntersuchungen 37: 255-264.
Sano, T., T. Nishimura, K. Oguma, K. Momoyama et N. Takeno. 1981. Baculovirus of cultured shrimp, Kuruma shrimp, Penaeus japonicus in Japan. Fish Pathology 15: 185-191.
Citation
Bower, S.M. (1996): Précis des maladies infectieuses et des parasites des mollusques et des crustacés exploités commercialement: Nécrose baculovirale de la glande intestinale (BMN) des crevettes penaeides
Date de la dernière révision : Septembre 1996
Faire parvenir les commentaires à Susan Bower
- Date de modification :