Microsporidiose des écrevisses
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Catégorie
Catégorie 1 (non observé au Canada)
Noms courants et généralement admis de l'organisme ou de l'agent pathogène
Maladie de la porcelaine, maladie cotonneuse, maladie laiteuse, maladie de la queue blanche, maladies des protozoaires, maladie des microporidies, Thelohaniasis des écrevisses.
Nom scientifique ou affiliation taxonomique
Diverses microsporidies telles que Thelohania contejeani, Thelohania spp., Pleistophora spp., Vavraia parastacida et certainement Nosema sp (identifié par Pixell Goodrich 1956 comme une microsporidie ayant une spore unique dans chaque vésicule à sporophores (pansporoblastique) chez 7 à 106 Austropotamobius pallipes originaires de la région de Wootten, en Angleterre). Généralement, la taxonomie des microsporidies d'écrevisse est peu connue, ce qui ne permet pas de déterminer avec précision quelle espèce a été décrite dans les différentes régions (Edgerton et al. 2002).
Répartition géographique
Eurasie, Nouvelle-Zélande et Australie, avec quelques cas identifiés aux États-Unis.
Espèces hôtes
Astacus astacus, Austropotamobius pallipes, Cambarellus shufeldi, Cambarus bartoni, Astacus (= Potamobius) pallipes, Cherax quadricarinatus, Cherax destructor, Cherax tenuimanus, Cherax albidus, Pacifastacus leniusculus et d'autres espèces. Au Canada, l'état pathologique de l'écrevisse reste encore à déterminer. Les microsporidies se trouvent aussi chez les crustacés marins tels que les homards, les crabes, les crevettes et les crevettes roses.
Impact sur les hôtes
Généralement, la prévalence est de moins de 5 %, mais quelques observations font état d'une prévalence allant jusqu'à 30 % (Evans et Edgerton 2002). Lorsque des écrevisses sont infectées par la Thelohaniasis, le tissu musculaire est progressivement envahi, ce qui conduit à la détérioration de la fonction musculaire et à la mort. La Thelohaniasis a été attribuée aux épidémies parmi les écrevisses en Europe. Les cycles de vie des microsporidies chez l'écrevisse sont très peu compris et peuvent faire intervenir des hôtes intermédiaires ou de transport. Toutefois, le V. parastacida peut se transmettre directement entre écrevisses par cannibalisme (Evans et Edgerton 2002). Même si les écrevisses C. tenuimanus et C. albidus avaient une importante réaction hémocytaire à l'infection par V. parastacida, cette résistance semblait se limiter aux zones où la masse sporale a rompu le sarcolemme et n'a pas réussi à arrêter la progression de la maladie qui était plus grave chez les C. albidus (Langdon et Thorne 1992). La microsporidiose a été décrite comme la menace pathologique la plus sérieuse dans l'aquaculture des écrevisses d'eau douce en Australie. Elle est en fait considérée comme une menace sérieuse pour l'écrevisse partout dans le monde. Cependant, Edgerton et Owens (1999) ont indiqué que la microsporidiose ne constituait pas une menace pour l'aquaculture semi-intensive des écrevisses C. quadricarinatus dans le nord du Queensland, en Australie. La microsporidiose est toujours mortelle quoique d'habitude, la maladie soit longue (Evans et Edgerton 2002).
Techniques de diagnostic
Observations générales
Difficile à détecter au cours des stades préliminaires, la maladie est reconnaissable par le blanchiment et l'opacification du muscle de l'abdomen (qui devrait être translucide), signe que l'infection se transforme progressivement en microsporidiose. Au dernier stade de l'infection, les écrevisses sont léthargiques et anorexiques (Evans et Edgerton 2002).
Préparation humide
La présence de la microsporidiose est confirmée par l'abondance des spores ovoïdes d'environ 3 à 5 µm de longueur révélée par l'examen au microscope des tissus blancs opaques.
Histologie
Présence de grappes de spores dans des tissus infectés. Bien que des spores soient contenues dans les vésicules à sporophores (pansporoblastiques) pour toutes les infections détectées chez les écrevisses à ce jour, la membrane qui constitue la vésicule à sporophores pourrait ne pas être visible dans les coupes histologiques. Le Thelohania spp. se trouve principalement dans le tissu musculaire et dans les vésicules à sporophores (de forme approximativement sphériques et d'environ 5 à 10 µm de diamètre) qui contiennent généralement huit spores ovoïdes (3,5 × 1,8 µm) ayant une vacuole claire sur un pôle. Vavraia parastacida se trouve aussi dans le tissu musculaire des différents organes, mais beaucoup plus dans le muscle antérieur dorsal de la queue. Les vésicules à sporophores de V. parastacida contiennent 8, 16 ou 32 (rarement 64) spores ovoïdes (5,5 × 2,6 µm) chacune ayant une large vacuole postérieure proéminente. Le Pleistophora spp. produit des spores en nombre variable, mais élevé, dans chaque vésicule à sporophores. Les vésicules à sporophores des microsporidies non identifiées chez C. quadricarinatus d'élevage au Nord du Queensland, en Australie, se trouvaient dans les tissus conjonctifs proches de l'hépatopancréas et contenaient des spores de 4,3 × 2,5 µm environ. Ces vésicules à sporophores provoquaient une forte réaction hémocytaire et une importante réaction mélanique (Edgerton et Owens 1999).
Microscopie électronique
L'examen ultrastructurel est nécessaire à l'identification spécifique. Langdon (1991) a mentionné les aspects ultrastructurels pouvant être utilisés pour différencier 11 genres de microsporidies à polyspores.
Méthodes de contrôle
Il est peu probable que le traitement soit efficace dans les élevages en étang. Prévenir l'introduction de la maladie est la meilleure solution.
Références
Alderman, D.J. et J.L. Polglase. 1988. Pathogens, parasites and commensals. In: D.M. Holdrich and R.S. Lowery (eds.). Freshwater Crayfish: Biology, Management and Exploitation. Timber Press, OR., p. 188-191.
Cossins, A. 1973. Thelohania contejeani Henneguy, microsporidian parasite of Austropotamobius pallipes Lereboullet - an histological and ultrastructural study. In: S. Abrahamsson (ed.). Freshwater Crayfish - Papers from the First International Symposium on Freshwater Crayfish. Austria 1972. Studentlitteratur, Lund, p. 151-164.
Cossins, A.R. et K. Bowler. 1974. An histological and ultrastructural study of Thelohania contejeani Henneguy, 1892 (Nosematidae), microsporidian parasite of the crayfish Austropotamobius pallipes Lereboullet. Parasitology 68: 81-91.
Edgerton, B.F. et L. Owens. 1999. Histopathological surveys of the redclaw freshwater crayfish, Cherax quadricrinatus, in Australia. Aquaculture 180: 23-40.
Edgerton, B.F., L.H. Evans, F.J. Stephens et R.M. Overstreet. 2002. Synopsis of freshwater crayfish diseases and commensal organisms. Aquaculture 206: 57-135.
Evans, L.H. et B.F. Edgerton. 2002. Pathogens, parasites and commensals; Chapter 10. In: Holdich, D.M. (ed.) Biology of Freshwater Crayfish. Blackwell Sciences Ltd., Oxford, England. pp. 377-438.
Pixell Goodrich, H. 1956. Crayfish epidemics. Parasitology 46: 480-483.
Herbert, B. 1987. Notes on diseases and epibionts of Cherax quadricarinatus and C. tenuimanus (Decapoda: Parastacidae). Aquaculture 64: 165-173.
Huner J.V. et E.E. Brown. 1985. Crustacean and Mollusk Aquaculture in the U.S. AVI Publishing, Westport, CT. 476 p.
Langdon, J.S. 1991. Description of Vavraia parastacida sp. nov. (Microspora: Pleistophoridae) from marron, Cherax tenuimanus (Smith), (Decapoda: Parastacidae). Journal of Fish Diseases 14: 619-629.
Langdon, J.S. et T. Thorne. 1992. Experimental transmission per os of microsporidiosis due to Vavaraia parastacida in the marron, Cherax tenuimanus (Smith), and yabby, Cherax albidus Clark. Journal of Fish Diseases 1992: 315-322.
McGriff, D. et J. Modi. 1983. Thelohania contejeani parasitism of the crayfish Pacifastacus leniusculus in California. California Fish and Game 69: 178-183.
Sogandares-Bernal, F. 1962. Presumable microsporidiosis in the dwarf crayfishes Cambarellus puer Hobbs and C. shufeldti (Faxon) in Louisiana. The Journal of Parasitology 48: 493.
Sparks, A.K. 1985. Synopsis of Invertebrate Pathology Exclusive of Insects. Elsevier Science Publishing Co. Inc., Amsterdam. p. 278-280.
Sprague, V. 1950. Thelohania cambari n. sp., a microsporidian parasite of North American crayfish. The Journal of Parasitology 36 (Supplement): 46.
Vey, A. 1986. Disease problems during aquaculture of freshwater crustacea. In: Brink, P. (ed.), Freshwater Crayfish VI, Papers from the Sixth International Symposium of Astacology. International Association of Astacology, Lund, pp. 212-222.
Citation
Bower, S.M. (2006) : Précis des maladies infectieuses et des parasites des mollusques et des crustacés exploités commercialement: Microsporidiose des écrevisses.
Date de la dernière révision : Juin 2006
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